medi info n°4

-info ER 4M
CONDITIONS PRÉANALYTIQUES EN HÉMOSTASE
 CONDITIONS DE PRÉLÈVEMENT
 Conditions de jeûne : si le bilan d’hémostase est isolé, le sujet peut ne pas être
strictement à jeun. Idéalement, et sauf urgence, il ne devrait pas avoir absorbé de
matières grasses depuis au moins 4h (pas de beurre, pas de lait entier, pas d’œuf).
 Type de tube et anticoagulant : le tube peut être en verre siliconé (type
Vacutainer sous vide) ou en matière plastique (type polypropylène). La date de
péremption doit être vérifiée régulièrement et respectée.
L’anticoagulant de référence est le citrate de sodium (tube à bouchon bleu). Toute
demande de test d’hémostase (TP, TCA, fibrine, D-dimères, facteurs de coagulation,
protéine C, protéine S, antithrombine III, résistance à la protéine C activée,…) doit êtreimpérativement effectuée sur ce type de tube. Le rapport anticoagulant/sang utilisé est de 1 volume d’anticoagulant pour 9 volumes de sang. Le tube doit donc être
impérativement rempli jusqu’à l’épuisement du vide.
Si le tube est insuffisamment rempli, la concentration finale de citrate augmente. Le
TCA est le test le plus sensible à cette augmentation : le TCA est allongé pour un
rapport anticoagulant/sang de 1/7, alors que le temps de Quick est allongé (et le
TP diminué) pour un rapport de 1/4,5.
Si le prélèvement est difficile, utiliser préférentiellement des tubes de 2 ml
respectant le rapport anticoagulant/sang.
L’utilisation des tubes CTAD (tube à bouchon bleu et étiquette rouge) contenant
un autre anticoagulant, le Citrate Théophylline Adénosine Dipyridamole, est
recommandée pour la surveillance des traitements hépariniques. Le facteur 4
plaquettaire libéré lors de l’activation plaquettaire neutralise l’héparine présente dans
l’échantillon. Le CTAD inhibe l’activation plaquettaire et réduit donc la neutralisationde l’héparine par le facteur 4 plaquettaire. Cet anticoagulant est particulièrement sensible à la lumière, les tubes doivent donc rester dans un emballage étanche auxrayons lumineux.
En pratique, pour le suivi biologique des traitements par héparine (HNF et
HBPM), le tube CTAD s’impose chaque fois que le délai entre le prélèvement
sanguin et l’arrivée de l’échantillon au laboratoire dépasse 1 h.
 TECHNIQUES DE PRÉLÈVEMENT
 Aiguilles à prélèvement :
L’aiguille doit être adaptée à la taille du vaisseau : une aiguille trop grosse ( > 1 mm)
est un facteur de traumatisme vasculaire susceptible de libérer des fragments
tissulaires qui peuvent modifier les tests d’hémostase. A l’ inverse ne pas utiliserd’aiguille d’un  < 0,7 mm car la dépression nécessaire à l’écoulement du sang risqued’être trop forte et d’induire une hémolyse et/ou une activation plaquettaire.
 Modalités pratiques du prélèvement :
Prélèvement de sang veineux réalisé au pli du coude par ponction franche, garrotmodérément serré, stase de durée minimale (une durée de garrot prolongée induit une élévation du taux de facteur VIII, de facteur Willebrand , de t-PA et entraîne une
activation de la fibrinolyse). Il est conseillé de laisser le garrot peu serré moins de
une minute et de l’enlever dès que le sang commence à arriver dans le tube. Laisser le
tube se remplir jusqu’à épuisement du vide, mélanger immédiatement par
retournement (5 fois).
Il faut éviter les prélèvements à la seringue avec remplissage secondaire des tubes, en
raison du risque d’activation plaquettaire et du système contact conduisant à laformation de microthrombi.
 Ordre des prélèvements :
Le tube destiné à l’hémostase doit être prélevé en premier avant le tube sec SST
(bouchon jaune) contenant un activateur de la coagulation et surtout avant un tube contenant un anticoagulant puissant type EDTA ou héparine, ce qui permet d’éviter lerisque de contamination par ces inhibiteurs.  Identification des prélèvements :
L’identification des tubes contenant l’échantillon doit être faite par le préleveur, au
moment où le prélèvement est réalisé, et mentionner obligatoirement nom,
prénom, date de naissance, date de prélèvement.
Du fait des contraintes liées au délai de traitement de l’échantillon destiné à
l’hémostase, il est recommandé de noter également l’heure du prélèvement.
 CONSERVATION DES ÉCHANTILLONS
Une fois le prélèvement effectué l’échantillon doit être conservé à température
ambiante. Le froid active le facteur VII source de raccourcissement du temps de Quick
préjudiciable à la surveillance d’un traitement par AVK.
Pour la plupart des paramètres d’hémostase le délai maximal à ne pas dépasser
entre le prélèvement de l’échantillon et son traitement au laboratoire est de 4h à

Source: http://www.medilab-group.eu/sites/default/files/infolabo/medi_info_ndeg4_0.pdf